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高效液相色谱HPLC检测 英格尔技术专业解析

发布时间:2017-05-17 14:37:54

近年来,随着分析测试技术的进步,HPLC检测应用越来越广。针对很多客户有HPLC检测需求,英格尔分析测试事业部简要介绍几种高效液相色谱测试放法。

高效液相色谱法:以气相色谱为基础,在经典液相色谱实验和技术基础上建立的一种液相色谱法。它以液体为流动相,采用高压输液系统,将具有不同极性的单一溶剂或不同比例的混合溶剂、缓冲液等流动相泵入装有固定相的色谱柱,在柱内各成分被分离后,进入检测器进行检测,从而实现对试样的分析。

(一)液固吸附色谱法(LSC)      

 流动相为液体,固定相为固体吸附剂;
1.分离机制:

利用溶质分子占据固定相表面吸附活性中心能力差异; 
分离前提:

K不等或k不等;
2.固定相:

与LC比,固定相粒径不同(<10μm); 
3.流动相:

底剂(烷烃)+有机极性调节剂;   
※例:正己烷或庚烷+氯仿。。。
4.影响K的因素:

与固定相性质和流动相性质有关;
溶质分子极性↑,洗脱能力↓,k↑,tR↑;
溶剂系统极性↑,洗脱能力↑,k↓,tR↓;
注:调节溶剂极性,可以控制组分的保留时间;
5.出柱顺序:

强极性组分后出柱,弱极性组分先出柱;
6.硅胶吸水量↑,LSC→LLC
硅胶含水量较小,吸附色谱,硅胶极性较大;
硅胶含水量>17% ,分配色谱,硅胶失活→载体;
吸附的水→固定液
(二)液-液分配色谱法(LLC)
1.分离机制:

利用组分在两相中溶解度的差异
2.固定相:

载体+固定液(物理或机械涂渍法)
缺点:

系统内部压力大,易流失,不实用
固定液-极性→NLLC

固定液-非极性→RLLC
3.①正相色谱-固定液极性>流动相极性(NLLC)
极性小的组分先出柱,极性大的组分后出柱:适于分离极性组分;
②反相色谱-固定液极性<流动相极性(RLLC)

极性大的组分先出柱,极性小的组分后出柱:适于分离非极性组分;
(三)化学键合相色谱法(BPC)
1.化学键合相 
(1)分离机制:

分配+吸附(以LLC为基础);
(2)特点:
 1)不易流失;
 2)热稳定性好;
 3)化学性能好;
 4)载样量大;
 5)适于梯度洗脱;
2.反相键合相色谱
(1)分离机制:

疏溶剂理论; 
正相-流动相与溶质排斥力强,作用时间↑,K↑,组分tR↑;
反相-流动相与溶质排斥力弱,作用时间↓,K↓,组分tR↓;
(2)固定相:

极性小的烷基键合相;
C8柱,C18柱(ODS柱-HPLC约80%问题);
(3)流动相:

极性大的甲醇-水或乙腈-水;
流动相极性>固定相极性;
底剂+有机调节剂(极性调节剂);
例:水+甲醇,乙腈,THF;
(4)流动相极性与k的关系:

流动相极性↑,洗脱能力↓,k↑,组分tR↑
(5)出柱顺序:

极性大的组分先出柱;

极性小的组分后出柱;
(6)适用:

非极性~中等极性组分(HPLC 80%问题)

3.正相键合相色谱
(1)分离机制:

溶质分子与固定相之间定向作用力、诱导力、或氢键作用力
(2)固定相:

极性大的氰基或氨基键合相;
(3)流动相:

极性小(同LSC);底剂+有机极性调节剂; 
例:正己烷+氯仿-甲醇,氯仿-乙醇;
(4)流动相极性与K的关系:
流动相极性↑,洗脱能力↑,组分tR↓,k↓;
(5)出柱顺序:

结构相近组分,极性小的组分先出柱,极性大的组分后出柱;
(6)适用:
氰基键合相与硅胶的柱选择性相似(极性稍小),分离物质也相似;
氨基键合相与硅胶性质差别大,碱性,分析极性大物质、糖类等;
4.离子对色谱和离子抑制色谱
反相离子对色谱法(IPC或PIC) 
反相色谱中,在极性流动相中加入离子对试剂,使被测组分与其中的反离子形成中性离子对,增加K和tR,以改善分离;
(1)离子对试剂:

烷基磺酸钠→分析碱
四丁基季胺盐→分析酸
(2)影响K的因素:
a.与m的极性有关(同反相色谱);
b.与R的链长有关:R↑长,极性↓小,tR↑,k↑;
(3)适用:

较强的有机酸、碱;

反相离子抑制色谱;
在反相色谱中,通过加入缓冲溶液调节流动相pH值,抑制;
组分解离,增加其K和tR,以达到改善分离目的;
1)离子抑制剂:

弱酸、弱碱性物质;

 pH一定的缓冲溶液;
2)K的影响因素:

与流动相极性有关,还与pH值有关;
选择流动相:

应同时考虑极性及pH值; 
酸性物质-加入酸HAc,tR↑,K↑; 
碱性物质-加入碱NH3·H2O,tR↑,K↑;  
调节pH范围:

3.0~8.0;
pH>8.0破坏键合相与载体的结合;
pH<3.0腐蚀柱子;
3)适用:

极弱酸碱物质;
pH=3~7弱酸;

pH=7~8弱碱;

两性化合物。

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