浅谈体内哺乳动物红细胞微核实验的疑难点

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浅谈体内哺乳动物红细胞微核实验的疑难点

西安国联质量检测技术股份有限公司

安评中心：闫敏

      本人长时间从事毒理学研究和安全评价工作，主要负责一般毒理和遗传毒理，微核试验属于遗传毒理实验中的一项重要研究，在不断的摸索和实验过程中，总结了几点经验和摸索出的关键点并做以下讨论：
      红细胞微核实验经过前几次的失败，总结了存在的问题和可能的影响因素如下：
    1.阳性结果不明显
      阳性对照使用环磷酰胺，环磷酰胺的水溶液不稳定，配制好后2-3h后有可能就会失效，并且要避光2-8℃保存。有时候实验使用的阳性对照溶液配制时间过长，可能已经失效。一般的阳性对照组溶液均为现配现用，不宜长时间放置，容易变质。
    2.取材，制片过程存在问题
    a.取骨髓时，肌肉组织未完全剥离，导致挤出骨髓时所含杂质太多；可以用纱布进行擦拭并剔除多余组织和肌肉，得到干净的股骨；
      b.取骨髓的方式有两种，用止血钳挤或者用注射器捅出骨髓，但是两种方法都不能将股骨损坏，导致取出量少，没有代表性，用小牛血清推片后，镜下阅片细胞量很少，达不到阅片效果。止血钳挤骨髓：剪去股骨大骨一端，用止血钳平行夹住股骨，然后轻轻挤压，骨髓会像牙膏一样挤出来，然后放在玻片上。注射器捅骨髓：剪去股骨两端，用镊子镊住股骨，置于小牛血清上，用注射器来回捅骨髓腔，让骨髓释放在血清中，混匀，推片。
    c.推片方法：推片一定要和玻片呈角度，一般为45°，推片向内侧倾斜，向外推片，使小牛血清平铺在载玻片面上。
    3.染色问题
    a.染液配比浓度高，染色时间过长。一般可采用1：9的比例来配制姬姆萨染液，染色10min，染液使用的PBS缓冲液的ph很重要，保持在6.8，ph偏酸或者偏碱都有可能导致红细胞染色效果不好，无法分辨成熟红细胞和嗜多染红细胞。
    b.冲洗染液时一定要彻底，及时，不能让染液残留较多。用流水沿玻片磨砂端冲洗，直至洗出的流水为无色。
    以上是在做红细胞微核试验时遇见并解决的问题，科研实验和研究就是在不断的失败和改正中获得成功。